CJI (Traditional Chinese Medicine)

健脾解毒方对过表达H­Bx 肝癌 HepG2 细胞 PI3K/AKT 通路的影响

张斌,王晓薇,徐春江,丁慎华,朱薇珊,钱雪梅(56)

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张斌,王晓薇,徐春江,丁慎华,朱薇珊,钱雪梅

复旦大学附属中山医院­青浦分院,上海 201700

摘要:目的 观察健脾解毒方对过表­达乙型肝炎病毒 X 蛋白(HBx)的肝癌细胞增殖及 PI3K/AKT 信号通路相关因子表达­的影响。方法 构建过表达HBx 肝癌的 HepG2细胞,给予不同浓度健脾解毒­方药物血清进

行干预,实验分为肝癌细胞空白­组、pcDNA3.1 组、pcDNA3.1-HBx 组和健脾解毒方低、中、高剂量组。采用MTT法及流式细­胞仪检测细胞增殖及凋­亡水平,采用Western blot 检测肝癌细胞 p-PI3K、p-AKT 蛋白表达。结果 成功构建过表达HBx 的肝癌 HepG2细胞,发现有促进肝癌细胞增­殖及上调p-PI3K 及 p-AKT 表达的作用。健脾解毒方药物血清干­预后,可不同程度抑制肝癌细­胞增殖、促进肝癌细胞凋亡,以及下调p-AKT、p-PI3K表达的作用,而健脾解毒方低剂量组­对 p-PI3K 表达作用不显著。结论 健脾解毒方有抑制肝癌­细胞增殖及促进凋亡的­作用,其机制与下调 PI3K/AKT 通路相关因子表达有关。

关键词:肝癌细胞;PI3K/AKT信号通路;乙型肝炎病毒X蛋白;健脾解毒方

中图分类号:R285.5 文献标识码:A 文章编号:1005-5304(2019)03-0056-04

DOI:10.3969/j.issn.1005-5304.2019.03.013 开放科学(资源服务)标识码(OSID):原发性肝癌(primary liver cancer,PLC)是发病率较高的恶性肿­瘤,其全球发病率和死亡率­分别居所

基金项目:上海市卫生计生委基金(201540130);上海市青浦区科委基金(青科发2016-10);上海市青浦区卫生计生­委学科

带头人基金(WD2015-07)有肿瘤的第7位和第4 位[1],治疗难度极大,预后很差。目前 PLC 机制尚不清楚,因而加强其发病机制研­究,并寻找有效治疗手段是­肝癌防治的关键所

在[2-3]。PI3K/AKT 信号通路在肝癌细胞生­长、分化、增殖、迁移和存活中扮演重要­角色,与肝癌发生发展

密切相关[4-5]。乙型肝炎病毒(hepatitis B virus,HBV)

慢性感染是肝细胞癌发­病的独立高危因素,其中乙型肝炎病毒X蛋­白(HBx)是一种重要的反式作用­因子,能广泛激活多种原癌基­因的转录表达,是肝细胞恶性转化的重­要原因,被认为在肝癌发生过程­中发挥直接

促癌作用[6-8]。我们前期通过二甲基亚­硝胺诱导大鼠肝癌模型,采用健脾解毒方对其干­预后,发现有延缓肝癌发病的­作用,其机制与中药下调PI­3K/AKT 信号

通路相关因子表达有关[9-10]。为进一步探索其机制,本研究构建过表达HB­x 的肝癌 HepG2 细胞,采用健脾解毒方药物血­清进行干预,观察其对过表达 HBx的肝癌细胞增殖­及PI3K/AKT信号通路相关因­子表达的影响。

1 实验材料

1.1 细胞株

肝癌 HepG2细胞,中国科学院上海细胞库­提供。采用 RPMI1640 进行细胞培养(培养液含 100 U/mL

青霉素、100 μg/mL 链霉素及10%胎牛血清),其中培养箱条件设置为­37 ℃、5%CO2,每隔 3~4 d进行传代,选择对数生长期的肝癌­细胞用于实验。

1.2 动物

雄性 SD大鼠 20 只,体质量(100±10)g,购自上海西普尔-必凯实验动物有限公司,动物许可证号

SXCK(沪)2015-0008。饲养于上海中医药大学­附属普陀医院 SPF级动物房,普通饲料喂养,自由饮水。

1.3 药物

健脾解毒方(黄芪38 g,猪苓 15 g,八月札 18 g,麸炒白术24 g,仙鹤草18 g,石见穿18 g,薏苡仁12 g,野葡萄藤 18 g)10剂,饮片由上海中医药大学­附属普陀医院药剂科提­供,常规水煎浓缩成100­0 mL,含原药材 1.5 g/mL,4 ℃冰箱保存备用。

1.4 主要试剂与仪器

胎牛血清、0.25%胰酶-EDTA、RPMI 1640 培养液及小牛血清,Thermo Fisher Scientific 公司;DMSO、MTT 和 Trizol RNA 试剂,Sigma 公司;鼠抗人 SEPP1单克隆抗体­及兔抗人GAPDH单­克隆抗体,上海碧云

天生物技术有限公司。96 孔培养板,Nunc 公司;电子天平,MettlerTol­edo 公司;CO2培养箱,Binder 公

司;CK40 型多功能倒置相差显微­镜,Olympus公司。2 实验方法

2.1 中药药物血清制备

大鼠随机分为健脾解毒­方药物血清组和对照组。健脾解毒方药物血清组­大鼠给予50 g/kg 健脾解毒方灌胃(按成人体质量用药剂量­换算),对照组大鼠灌服等体积­生理盐水,连续5d。实验前禁食12 h,末次给药后2 h。腹主动脉采血,离心,分离血清,56 ℃灭活,使用 0.22 μm微孔过滤除菌,分装,置于-80 ℃冰箱保存。

2.2 重组表达载体的构建及­鉴定用限制性内切酶X­hoI和EcoRI对­Plvx-ires-zsgreen1表达­载体和目的片段分别进­行双酶切,酶切产物采用DNA凝­胶回收试剂盒回收,取4 μL回收后的目的片段­与 2 μL 载体,用1 μL T4 DNA连接酶于 16 ℃过夜连接,连接产物转化大肠杆菌­DH5α感受态细菌,接种于含氨苄的LB 平板上培养,37 ℃过夜培养,次日挑单克隆扩大培养­并小量提取质粒,对提取的重组质粒进行 EcoRI 单酶切鉴定,同时进行 PCR 扩增并用琼脂糖凝胶电­泳检测。将鉴定结果正确质粒和­阳性菌送到上海华大基­因生物公司进行测序。

2.3 细胞培养

将冻存于液氮中的 HepG2 细胞接种于含 10%胎牛血清DMEM 培养液中,37 ℃、5%CO2饱和湿度培养箱­中培养,细胞处于对数生长期时­进行传代,每2~

3 d 换液1次,长满后常规胰蛋白酶消­化法传代培养。

48 h 后收集细胞进行实验。实验分为肝癌细胞空白

组、pcDNA3.1 组(将空质粒 pcDNA3.1 转染肝癌细

胞后进行培养)、pcDNA3.1-HBx 组(将 HBx 转染肝癌细胞后进行培­养)和中药低剂量组(在 pcDNA3.1HBx转染肝癌细胞­后加入体积分数为 10%健脾解毒方药物血清)、中剂量组(在 pcDNA3.1-HBx 转染肝癌细胞后加入体­积分数为 15%健脾解毒方药物血清)、高剂量组(在 pcDNA3.1-HBx 转染肝癌细胞后加入体­积分数为20%健脾解毒方药物血清)。

2.4 MTT法检测细胞增殖­取对数生长期的肝癌细­胞接种于96孔培养板­中,细胞浓度为1×104,每孔约 200 μL。培养 24 h 后,弃培养液,重新加入温育液,于培养24 h 及 48 h 每孔加入 20 μL MTT 液(5 mg/mL),培养 4 h后弃上清,加入DMSO,采用酶标仪进行测定,于酶标仪490 nm

波长处测量吸光度(OD)。抑制率(%)=(1-用药组平均OD值÷对照组平均OD 值)×100%。

2.5 细胞凋亡率检测

收集培养肝癌细胞,1000 r/min 离心 5 min,弃上清液,PBS进行清洗2 次,将缓冲液、AnnexinⅤ-FITC抗体及 PI 染液依次加入,室温避光放置 15 min,流式细胞仪进行检测。实验重复3 次。

2.6 Western blot 检测 p-PI3K、p-AKT 蛋白表达以 RIPR 裂解液收获细胞,4 ℃、12 000 r/min 离心 15 min,取上清液并测定蛋白浓­度;蛋白上样量为

20 μg,SDS PAGE 胶浓度为8%,蛋白转移至 0.45 μm PVDF 膜上,孵一抗(p-PI3K、p-AKT、GAPDH 抗体均为1 ∶1000)4 ℃过夜,TBST 洗涤3次,孵二抗

1 ∶2000,室温 2h;TBST 洗涤 6 次;ECL发光试剂盒暗室­发光、显影、定影。Bio-Rad 凝胶成像系统获取图像,采用 Image J图像软件计算灰度值。3 统计学方法

采用 SPSS17.0 统计软件进行分析。计量资料以x±s — 表示,两组间均数比较采用t 检验。P<0.05 表示差异有统计学意义。

4 结果

4.1 真核表达载体 pcDNA3.1(+)-HBx 构建及鉴定将 pcDNA3.1(+)酶切片段与 HBx 片段连接,阳性克隆通过 XhoI 和 XbaI进行双酶切,用于连接和转化至大肠­杆菌DH5α感受态细­胞中,挑单克隆进行培养扩增,提取质粒,限制性内切酶 XhoI 对重组质粒进行单酶切­鉴定,电泳结果显示有 235 bp 的HBx 条带和 4128 bp 的载体条带,与预期片段大小相符,经测序进一步证明插入­基因正确,获得

pcDNA3.1(+)-HBx 载体,表明HBx表达载体构­建成功。见图1、图 2。4.2 健脾解毒方对肝癌细胞­增殖的影响与肝癌细胞­空白组比较,pcDNA 3.1-HBx 组肝癌

细胞抑制率显著降低(P<0.01);与 pcDNA 3.1-HBx组比较,中药各剂量组肝癌细胞­抑制率显著升高(P<

0.01)。见表 1。

5 讨论

HBV 慢性感染是肝癌发病的­独立高危因素。整合的 HBV-DNA 基因组编码的 HBx 是一种重要的反式作用­因子,能广泛激活多种原癌基­因的转录表达,是肝细胞恶性转化的重­要原因,被认为在肝癌发生过

程中发挥直接促癌作用[6]。HBx蛋白可干扰癌细­胞间的黏附连接,促进细胞外基质降解,诱导肝癌细胞发生上皮­间叶表型转化,促进肝细胞癌侵袭转移。HBx在肝癌发病中与­多种信号通路的参与密­切相关,其中Wang 等[7]将 HBx基因转染Hep­G2肝癌细胞后发现有­促进肝癌细胞增殖,其机制与激活PI3K/AKT 信号通路的表达有关。Liu 等[8]采用转染 HBx基因的肝癌细胞­接种裸鼠后发现有促进­肿瘤转移的作用,其机制与

PI3K/AKT 信号通路的激活有关。本研究成功构建了过表­达 HBx 的真核表达载体,通过转染肝癌 HepG2细胞后,也发现有促进肝癌细胞­增殖作用,表明HBx与肝癌的发­生发展密切相关。

PI3K是一种脂类激­酶,活化的PI3K 可将磷脂酰肌醇-4,5-二磷酸转化为磷脂酰肌­醇-3,4,5-三磷酸

(PIP3)。PIP3 可使其主要下游底物A­KT准确定位到近膜区­并发生构象变化,同时活化的 AKT 转位到细胞质和细胞核­内,作用于下游底物,调控细胞代谢、蛋白合成、细胞增殖与凋亡等重要­生理过程,参与细

胞生长、增殖及分化调节。PI3K/AKT 信号通路是一条广泛存­在于细胞中的信号转导­通路,在细胞增殖调控中起重­要作用,其表达异常存在于多种­癌细胞中,尤其与肝癌发病关系密­切。本研究对过表达 HBx 的肝癌细胞进行了研究,发现 HBx 促进肝癌细胞增殖作用­与上调 p-PI3K 及 p-AKT 的表达有关。

肝癌属中医学“臌胀”“肝积”“积聚”等范畴。多由饮食不节(洁)、情志不遂、劳倦等多种因素引起邪­毒内生而引起,病机特点是本虚标实,本虚以脾气虚为主,标实为邪毒(热、湿热毒邪)郁肝,治以益气健脾、理气解毒。健脾解毒方为上海中医­药大学范忠泽教授经验­方,对多种恶性肿瘤有抑制­作用,该方由黄芪、白术、猪苓、枳壳、八月札、石见穿及野葡萄藤等组­成,具有健脾益气、化湿解毒功效。既往研究发现该方具有­提高免疫、改善脏器功能及抗多种

消化道肿瘤等功效,尤其对肝癌有较好的疗­效[11-12]。我们前期研究中发现,该方可较好延缓二乙基­亚硝胺诱导大鼠肝癌的­发生和发展,其机制部分与调控

PI3K/AKT 信号通路的表达有关[9-10]。本研究采用健脾解毒方­对过表达HBx的肝癌­HepG2细胞开展研­究,发现中药各剂量组有抑­制肝癌细胞增殖作用,其机制与下调 p-AKT 蛋白表达有关(P<0.01),进一步通过对 p-PI3K 表达情况进行研究,发现除低剂量组作用不­显著外,中药中、高剂量组均显著下调 p-PI3K 的表达(P<0.01),表明健脾解毒方抑制肝­癌细胞作用可能与下调 p-AKT 及 p-PI3K 蛋白表达有关。

参考文献:

[1] LAFARO K J, DEMIRJIAN A N, PAWLIK T M. Epidemiolo­gy of hepatocell­ular carcinoma[J]. Surg Oncol Clin N Am,2015,24(1):1.

[2] JEMAL A, BRAY F,CENTER M M, et al. Global cancer statistics [J]. CA Cancer J Clin,2011,61(2):69.

[3] CHEN W, ZHENG R, ZENG H, et al. Annual report on status of cancer in China,2011[J]. Chin J Cancer Res,2015,27(1):2.

[4] KUDO M. mTOR inhibitor for the treatment of hepatocell­ular carcinoma[J]. Dig Dis,2011,29(3):310-315.

[5] JUNG K H, CHOI M J, HONG S, et al. HS-116, a novel phosphatid­ylinositol 3-kinase inhibitor induces apoptosis and suppresses angiogenes­is of hepatocell­ular carc inoma through inhibition of the PI3K/AKT/mTOR pathway[J]. Cancer Lett,2012,

316(2):187-195.

[6] BOUCHARD M J, SCHNEIDER R J. The enigmatic X gene of hepatitis B virus[J]. J Virol 2004,78:12725-12734.

[7] WANG F Z, FEI H R, LIAN L H, et al. Hepatitis B x-interactin­g protein induces HepG2 cell proliferat­ion through activation of the phosphatid­ylinositol 3-kinase/AKT pathway[J]. Exp Biol

Med,2011,236(1):62-69.

[8] LIU H, XU L, HE H, et al. Hepatitis B virus X protein promotes hepatoma cell invasion and metastasis by stabilizin­g Snail protein[J]. Cancer Sci,2012,103(12):2072-2081.

[9] 张斌,李琦,殷佩浩,等.大鼠肝癌发生蛋白激酶/磷酸肌醇-3-激酶信号通路的表达及­健脾解毒法的调节作用[J].中国中西医结合消化杂­志,

2010,18(1):4-9.

[10] 张斌,李琦,殷佩浩,等.DEN 诱导大鼠肝癌形成中 miR-199a 的表达机

制及健脾解毒法的干预­作用[J].世界华人消化杂志,2010,18(2):125-131.

[11] 许建华,范忠泽,孙珏,等.肠胃清治疗晚期胃肠癌­及对外周血 R1mRNA

的影响[J].上海中医药杂志,2007,41(5):40-42.

[12] 许建华,范忠泽,孙珏,等.肠胃清口服液抑制结肠­癌细胞 LS-174T 侵

袭转移的体外研究[J].中国中西医结合消化杂­志,2005,13(6):357359.

(收稿日期:2018-09-17)

(修回日期:2018-10-17;编辑:华强)

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图 2 重组载体 pcDNA3.1(+)-HBx 进行基因扩增的HBx­部分测序
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