CJI (Traditional Chinese Medicine)

电针对 SAMP8小鼠学习记­忆与海马神经元NMD­A 受体表达的影响

骆雍阳,蒋艺燕,杨文丹,赵恩聪,李斐斐,许茜,钱长晖,董卫国

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骆雍阳1,蒋艺燕2,杨文丹1,赵恩聪1,李斐斐1,许茜2,钱长晖2,董卫国 2

1.福建中医药大学针灸学­院,福建 福州 350122;

2.福建中医药大学中西医­结合学院,福建 福州 350122

摘要:目的 观察电针“百会”“大椎”“肾俞”对SAMP8小鼠学习­记忆与海马神经元NM­DA受体 NR2A和 NR2B 表达的影响,探讨电针治疗阿尔茨海­默病的机制。方法 6 月龄 SAMP8 小鼠 24 只,随机分为模型组和电针­组,同龄正常老化 SAMR1 小鼠 12 只为对照组。电针组电针“百会”“大椎”“肾俞”30 d。Morris水迷宫实­验检测小鼠学习记忆能­力,免疫组化染色和 Western blot 检测海马神经元 NR2A 和 NR2B的表达。结果 与对照组比较,模型组小鼠逃避潜伏期­明显延长(P<0.01),原平台象限停留时间明­显缩短(P<0.01),

跨越原平台次数明显减­少(P<0.01),海马神经元NR2A 相对表达量明显升高(P<0.01),NR2B 相对表达量

明显下降(P<0.01);与模型组比较,电针组小鼠逃避潜伏期­明显缩短(P<0.05),原平台象限停留时间明­显

延长(P<0.01),跨越原平台次数明显增­加(P<0.05),海马神经元 NR2A 相对表达量明显下降(P<0.05),

NR2B 相对表达量明显升高(P<0.01)。结论 电针能改善 SAMP8 小鼠的学习记忆能力,其作用机制可能与电针­抑制海马神经元NMD­A 受体 NR2A的表达和促进­NMDA 受体 NR2B的表达有关。关键词:阿尔茨海默病;电针;NMDA受体;SAMP8 小鼠

中图分类号:R245 文献标识码:A 文章编号:1005-5304(2019)03-0051-05

DOI:10.3969/j.issn.1005-5304.2019.03.012 开放科学(资源服务)标识码(OSID):

阿尔茨海默病(Alzheimer disease,AD)是以进行性认知功能障­碍和记忆损害为主的中­枢神经系统退行性疾病。其主要病理特征是细胞­外β-淀粉样蛋白(amyloid β-protein,Aβ)沉积形成的老年斑、细胞内高度磷酸化 tau 蛋白形成的神经纤维缠­结以及神经元和突触数­量的减少。有研究报道,AD 早期可见突触功能障碍­和突触丢失,提高突触可塑性能改善­认知

[1-2]

功能障碍 。 N- 甲基 -D- 天冬氨酸受体(N-methyl-D-aspartate receptor,NMDAR)是一种离子通道型谷氨­酸受体,在突触可塑性的调控中­起非常

重要的作用,参与学习和记忆的产生­和维持过程[3] 。这与 NMDA 受体的功能单位 N-甲基-D-天冬氨酸受体 2A(N-methyl-D-aspartate receptor subunit 2A,

NR2A )亚基和 N-甲基 -D-天冬氨酸受体 2B (N-methyl-D-aspartate receptor subunit 2B,NR2B)亚基密切相关。我们前期研究表明,电针治疗能改善快速老­化模型小鼠亚系 SAMP8 小鼠学习记忆能力和

突触功能[4-6]。SAMP8 小鼠目前被认为是一种­较为完善的AD 模型[7] ,已广泛应用于AD 的研究[8]。本实验通过电针 SAMP8 小鼠“百会”“大椎”“肾俞”,观察电针对SAMP8­小鼠海马神经元NMD­A受体NR2A和 NR2B表达的影响,探讨电针改善SAMP­8 小鼠学习记忆能力的可­能机制,为电针防治AD的临床­应用提供依据。

1 材料与方法

1.1 动物及分组

6月龄抗快速老化小鼠­亚系SAMR1 小鼠 12 只,雄性,体质量 20~25 g,北京大学医学部实验动­物中心提供,实验动物质量合格证号 SCXK (京)

2011-0012,设为对照组;6 月龄 SAMP8 小鼠 24 只,雄性,体质量 20~25 g,采用随机数字表法将其­分为模型组和电针组,每组 12 只,北京维华阜康生物科技­股份有限公司提供,实验动物质量合格证号­SCXK

(京)2014-0004。饲养于福建中医药大学 SPF 级动物实验中心,实验前小鼠适应性喂养­1个月,实验动物均在完全一致­的生活环境和饮食条件­下饲养,温度

(23±1)℃,相对湿度(55±15)%,12 h 光照,自由摄食饮水。实验过程严格按国际动­物保护及使用指南进行。

1.2 主要试剂与仪器

兔多克隆抗体NR2A(批号 ab203197),Abcam;兔多克隆抗体NR2B(批号 21920-1-AP),Proteintec­h; β-actin(批号 20536-1-AP),Proteintec­h;生物素标记的羊抗兔 IgG、DAB试剂盒,福州迈新生物工程有限­公司;特超敏 ECL 化学发光试剂盒,碧云天生物技术公司;Motic Med 6.0 数码医学图像分析系统, Bio-Rad 图像分析系统。G6805-Ⅰ电针治疗仪,青岛

鑫升实业有限公司;0.25 mm×15 mm华佗牌无菌针灸针,苏州医疗用品厂有限公­司;Morris水迷宫系­统,中国医学科学院药物研­究所;电镜CCD 相机-图像采集分析系统,德国 Soft-Imaging-System 公司。

1.3 干预电针组采用自制网­兜固定小鼠,选择“百会”“大

椎”“肾俞”进行电针治疗,参照《实验针灸学》[9]取穴、定位:“百会”位于小鼠顶骨的正中,“大椎”位于背部正中(第7颈椎与第1胸椎间),“肾俞”位于第 2腰椎下两旁。具体操作方法:“百会”向前斜刺 2 mm,“大椎”向下斜刺2~3 mm,“肾俞”稍向内斜刺3~4 mm,其中“大椎”“肾俞”加电针,“肾俞”双侧交替进行。进针后不进行手法刺激,连接电针治疗仪,连续波,频率2 Hz,电流强度以引起小鼠后­肢肌肉轻微颤动而不嘶­叫为宜。每日1次,每次20 min,8d为 1 个疗程,疗程间隔 2 d,进行下 1 个疗程,共 3个疗程。模型组和对照组不进行­电针治疗,只进行与电针组相同方­式、时间和程度的抓取和固­定。

1.4 Morris 水迷宫实验

采用 Morris 水迷宫实验检测小鼠空­间学习记忆能力,包括有定位航行实验和­空间探索实验。电针治疗结束后开始进­行定位航行实验。将平台置于第三象限,没于水下1 cm,每日上、下午各训练4次,将小鼠分别从4个入水­点(各象限池壁中点)面向桶壁放入水中,记录小鼠爬上平台所需­时间,即逃避潜伏期,如果 90 s 内未找到平台则将其引­至平台并在平台停留 10 s,记录逃避潜伏期为90 s,连续 5 d。第 6日撤

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