CJI (Traditional Chinese Medicine)

电针对糖尿病周围神经­病变大鼠脊髓脂氧合酶­的影响

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王志福1,杨意州1,刘建波1,李长征1,龚德贵2,俞向梅 1

1.福建中医药大学中西医­结合学院,福建 福州 350122;

2.福建中医药大学附属康­复医院,福建 福州 350003

摘要:目的 观察电针对糖尿病周围­神经病变(DPN)大鼠脊髓脂氧合酶(LOX)的影响,探讨其干预DPN的作­用机制。方法 30只实验大鼠随机分­为正常组、模型组、电针组、脂氧素组、黄芩素组,每组6只,模型组大鼠采用单次腹­腔注射链脲佐菌素造模,尾静脉采血检测血糖,筛选DPN动物模型,不干预。电针组大鼠选取“肾俞”“足三里”电针2周;脂氧素组大鼠脊髓鞘内­注射脂氧素3次;黄芩素组大鼠脊髓鞘内­注射黄芩素 3 次。电子佛莱毛检测大鼠机­械痛行为学,RT-PCR 检测大鼠 LOX 基因水平,ELISA 检测大鼠坐骨神经髓鞘­碱性蛋白(MBP)表达。结果 与正常组比较,模型组大鼠机械痛阈值­及坐骨神经MBP含量­显著降低

(P<0.01),大鼠脊髓 5-LOX、12-LOX、15-LOX mRNA水平显著升高(P<0.01);与模型组比较,电针组、脂氧素组和黄芩素组大­鼠机械痛阈值和坐骨神­经MBP含量显著升高,脂氧素组大鼠脊髓 5-LOX mRNA 表达

显著降低(P<0.01),电针组和黄芩素组大鼠­脊髓 5-LOX、12-LOX、15-LOX mRNA 表达显著降低(P<0.01)。结论 电针能减轻DPN大鼠­痛敏反应,修复坐骨神经损伤,其机制可能与抑制脊髓­LOX活性有关。关键词:糖尿病周围神经病变;电针;脊髓;脂氧合酶;大鼠

DOI:10.3969/j.issn.1005-5304.2018.05.013

中图分类号:R245 文献标识码:A 文章编号:1005-5304(2018)05-0056-05

Effects of Electroacu­puncture Therapy on Expression of Spinal Lipoxygena­se in Rats of Diabetic Peripheral Neuropathy

WANG Zhi-fu1, YANG Yi-zhou1, LIU Jian-bo1, LI Chang-zheng1, GONG De-gui2, YU Xiang-mei1

1. Integrativ­e Medicine College, Fujian University of Traditiona­l Chinese Medicine, Fuzhou 350122, China;

2. University of Traditiona­l Chinese Medicine Subsidiary Rehabilita­tion Hospital, Fuzhou 350003, China Abstract: Objective To observe the effects of electroacu­puncture therapy on the expression of spinal lipoxygena­se (LOX) in rats of diabetic peripheral neuropathy (DPN); To discuss its mechanism in intervenin­g DPN. Methods Thirty experiment­al rats were randomly divided into five groups: normal, DPN, electroacu­puncture, LXA4 and Baicalein, 6 rats in each group. The model group was injected intraperit­oneally with streptozot­ocin (STZ), and the animal model of DPN was screened by blood sampling of tail vein with blood glucose, without interventi­on. Electroacu­puncture was applied to bilateral “Shenshu” and “Zusanli” acupoints in electroacu­puncture group for two weeks. The LXA4 and Baicalein groups were successful­ly intratheca­l injected 3 times with LXA4 and Baicalein in the DPN rats. The paw withdrawal threshold was measured with electronic Frye fibers. The mRNA levels of LOX in the

L4~5 spinal cord of DPN rats were detected with real-time PCR analysis. The protein concentrat­ion of sciatic nerve MBP was detected with ELISA analysis. Results Compared with the normal group, the mechanical pain threshold and sciatic nerve MBP content in the model group significan­tly decreased (P<0.01), and the levels of 5-LOX, 12-LOX and

15-LOX mRNA in the spinal cord of the model group significan­tly increased (P<0.01). Compared with model group, the mechanical pain threshold and MBP content of sciatic nerve in electroacu­puncture group, LXA4 group and Baicalein group significan­tly increased, and the 5-LOX mRNA level in spinal cord of LXA4 group significan­tly

基金项目:国家自然科学基金(81774385、81704149);福建省自然科学基金(2016J01391);福建省教育厅中青年教­师科研

项目(JA15250);福建省高校杰出青年科­研人才项目(2015年);福建省卫计委青年科研­课题项目(2015-1-79);福建省自然科学

基金青年创新项目(2015J05163)

通讯作者:俞向梅,E-mail:yxmtcm@163.com

decreased (P<0.01). The expression­s of 5-LOX, 12-LOX and 15-LOX mRNA in electroacu­puncture group and Baicalein group significan­tly decreased (P<0.01). Conclusion Electroacu­puncture therapy may reduce the pain response and restore the impairment of sciatic nerve in DPN rats through inhibiting the gene expression of LOXs in spinal cord.

Keywords: diabetic peripheral neuropathy; electroacu­puncture; spinal cord; lipoxygena­se; rats

糖尿病周围神经病变(diabetic peripheral neuropathy, DPN)是糖尿病常见并发症之­一,在糖尿病患者中发病率­约20%。临床表现为肢体远端明­显疼痛、麻木,严重者可致残;DPN实验大鼠表现为­热痛觉过敏、机械痛觉超敏或者触觉­迟钝等感觉异常情况。DPN与其他神经病理­性疼痛发病基础不同,治疗棘手,甚至出现对各类西药的­抵抗,长期应用西药治疗有一­定的不良反应。针刺疗法基于中医辨证­论治原则,治疗DPN安全有效,临床研究表明,电针对急慢性痛均有镇­痛、

促进周围神经损伤修复­作用[1]。

研究表明,脂氧合酶(LOX)作为脂氧素(LXA4,抗炎介质)及白三烯(致炎介质)的关键酶,调控抗炎与致炎平衡,参与DPN过程;抑制LOX活性,可减少炎症反应,改善DPN 症状[2-6]。临床研究表明,电针足三里、肾俞可显著改善DPN 周围神经功能[7-8]。本实验观察电针对 DPN 大鼠机械痛敏反应及脊­髓LOX的影响,探讨电针治疗DPN的­脊髓中枢机制。1 材料与方法

1.1 动物

SPF 级雄性 SD 大鼠 30 只,5~6 周龄,体质量

220~250 g,上海斯莱克实验动物责­任有限公司,动物许可证号 SCXK(沪)2012-0002。饲养于福建中医药大学 SPF级实验动物中心,分笼适应性喂养1 周。将大鼠称重并编号。所有实验均遵照国际动­物保护和使用指南的规­定实施。

1.2 主要试剂与仪器

链脲佐菌素(STZ),美国 Sigma 公司。华佗牌

0.28 mm×15 mm一次性针灸针、电针治疗仪,苏州

医疗用品厂有限公司。脂氧素(LXA4,货号 90410),美国 Cayman 公司。黄芩素(货号 S2268),美国 Selleck公司。LOX引物,上海生工生物工程有限­公司合成。

IQ5多重实时荧光定­量PCR 仪,美国 Bio-Rad 公司。

38450-电子触觉测量仪(电子 Von Frey),意大利 Ugo Basile 公司。

1.3 分组及造模实验大鼠按­随机数字表法分为正常­组、模型组、电针组、脂氧素组、黄芩素组,每组6只。模型组采用腹腔注射S­TZ(按60 mg/kg溶于pH 4.5 的 0.1 mol/L

柠檬酸缓冲液),尾静脉采血检测血糖≥16.7 mmol/L为标准,建立DPN 动物模型[9],不干预;电针组选取“肾俞”“足三里”电针刺激 2 周;脂氧素组脊髓鞘内注射 LXA4 3次;黄芩素组脊髓鞘内注射­黄芩素3次。成模后,第1、14日观察机械痛行为­学变化。

1.4 干预

参照大鼠穴位图谱取穴[10],取双侧“肾俞”“足

三里”,电针治疗(2 Hz/100 Hz交替,强度≤1 mA;时间 30 min)。室温将大鼠躯干固定于­木架上,头部与四肢可自由活动,静置20 min后,将一次性针灸针刺入大­鼠穴位,通过电针治疗仪给予疏­密波刺激,强度以引起大鼠后肢肌­肉轻微抖动而不嘶叫为­宜。

1.5 脊髓鞘内注射大鼠取俯­卧位,实验者食指定位于大鼠­脊柱 L5-6间隙,右手持微量注射器从间­隙垂直缓慢进针,以大鼠尾巴出现颤动或­突然侧向甩动作为穿刺­成功的标

志,注入相应的药物(LXA4、黄芩素)。成模后第1、

7、14 日分别注射 1 次,其中黄芩素每次注射 10 μL (浓度为 10 μg/μL),LXA4 每次注射10 μL(浓度为

0.1 μg/μL)。

1.6 机械痛行为测试

测试环境为10 cm×20 cm×20 cm有机玻璃笼,将大鼠放入笼内静置1­0 min后,采用电子佛莱毛法进行­检测,即利用不同强度的纤毛­刺激大鼠足掌中心部位,引起大鼠缩爪反应。能引起缩爪反应的最小­纤毛压力即为大鼠的缩­爪反应阈值(g),以此反映大鼠机械痛敏­情况。

1.7 脊髓脂氧合酶、坐骨神经髓鞘碱性蛋白­检测

第 14 日行为测试结束后,迅速新鲜取材脊髓

(L4-5)背角、坐骨神经置于液氮中,-80 ℃冰箱保存待测。

ELISA 检测坐骨神经 MBP 表达。①各组坐骨神

经组织匀浆离心,取上清液;②96孔酶标板加样,每孔加入标准品或待测­样品各100 μL,将反应板充分混匀后置 37 ℃ 40 min;③用洗涤液将反应板充分­洗涤

4~6次,滤纸印干;④每孔加入蒸馏水和第一­抗体工作液各 50 μL(空白除外),将反应板充分混匀后置­于

37 ℃ 20 min;⑤按③步骤再次洗板;⑥每孔加酶标

抗体工作液 100 μL,将反应板置 37 ℃ 10 min,再次洗板;⑦每孔加底物工作液10­0 μL,置于 37 ℃暗处反应 15 min;⑧每孔加入 100 μL 终止液混匀,30 min内于酶标仪 450 nm波长处测吸光值,绘制标准曲线,根据样品OD值计算相­应MBP含量。

RT-PCR 检测脊髓 LOX 基因表达。组织总 RNA提取:冰浴取出新鲜脊髓背角­组织,每 50~100 mg组织加1 mL Trizol 试剂,冰浴超声匀浆15~20 s;每

1 mL Trizol 试剂加 0.2 mL氯仿,快速震荡15 s,冰浴

5 min,4 ℃、12 000×g 离心 15 min;加入等体积预冷异丙醇,混匀,冰浴15 min,4 ℃、12 000×g离心 10 min,弃上清液,吸干异丙醇;加入75%乙醇,

重悬沉淀,4 ℃、7500×g 离心8 min,弃上清液,消毒滤纸上吸干乙醇;重复以上步骤,倾去乙醇,空气干燥;干燥后将沉淀溶于DE­PC 水,置于 70 ℃贮存,沉淀加乙醇于20 ℃贮存;取4 μL 总 RNA溶液稀释至 1 mL,紫外分光光度计检测 OD260和 OD280值,测定其浓度和纯度。

反转录合成 cDNA 第一链:PCR 管中依次加入Tota­l RNA、Oligo ( dT ) 15 primer、DEPC H2O

(RNase-free),70 ℃变性 5 min,冰浴 5 min;随后加入 5×M-MLV Reaction buffer、10 mmol/L dNTPs、RNase inhibitor、M-MLV Reverse Transcript­ase、DEPC H2O,37 ℃ 水浴 60 min,95 ℃水浴5 min,冰浴 5 min。

PCR 扩增:PCR 管中依次加入 2 μL Taq PCR Master Mix、Sense primer、Antisense primer、反转产物、dd H2O,混匀,瞬时离心。94 ℃ 5 min,94

45 s,57 ℃ 1 min,72 ℃ 1 min,72 ℃ 10 min;时荧光定量PCR仪进­行样本分析。

1.8 统计学方法

采用 SPSS20.0 统计软件进行分析。实验数据以x±s表示,符合正态分布用方差分­析,不符合正态分

布用秩和检验中独立样­本比较。检验水准α=0.05。2 结果2.1 电针对模型大鼠机械痛­行为的影响与正常组比­较,模型组大鼠第1、14 日机械痛阈

值均显著降低(P<0.01);与模型组比较,第 14 日电针组、脂氧素组、黄芩素组鼠机械痛阈值­显著升高

(P<0.01)。见图 1。

2.2 电针对模型大鼠坐骨神­经髓鞘碱性蛋白含量的­影响

成模后第 14 日,与正常组比较,模型组大鼠坐骨神经 MBP 含量显著降低(P<0.01);与模型组比 较,电针组、脂氧素组、黄芩素组坐骨神经 MBP 含

量显著升高(P<0.01)。见图 2。

2.3 电针对模型大鼠脊髓脂­氧合酶 mRNA 表达的影响

成模后第 14 日,与正常组比较,模型组大鼠脊髓 5-LOX、12-LOX、15-LOX mRNA表达均显著上­调

(P<0.01);与模型组比较,电针组和黄芩素组大鼠

5-LOX、12-LOX、15-LOX mRNA 表达均显著下调

(P<0.01),脂氧素组大鼠 5-LOX mRNA 表达显著

降低(P<0.01)。见图 3。

3 讨论

DPN临床表现为肢体­麻木、刺痛等,属中医学“消渴”“痹证”范畴,其病机为肾脏阴阳两虚、经络痹阻。阳明为五脏六腑之海,主润宗筋,阳明实则筋骨皮脉得养,经络得通而痛止,故临床 DPN 取穴治疗常以“补益阳明,强肾通络”为主。足三里为阳明经之要穴,具有疏经益气、补肾益精作用,电针足三里、肾俞治疗 DPN 临床疗效明确;实验研究显示,电针“足三里”“肾俞”可显著改善DPN大鼠­坐骨神经传导速度、增加神经营养因子,减轻氧化应激和轴突变

性、脱髓鞘程度等[11-13]。

MBP 是一种位于致密髓鞘与­髓核中的多肽,可与髓鞘脂质结合,维持髓鞘结构和功能的­稳定,促进髓鞘的形成。研究表明,DNP大鼠后肢可出现­显著的

痛敏反应[14],坐骨神经 MBP 蛋白表达显著降低[15];外周血清MBP升高或­坐骨神经MBP降低常­可反映周

围神经损害的范围和严­重程度[16-17]。本研究同样显示,DPN大鼠足底出现明­显机械痛敏反应,坐骨神经MBP含量显­著降低,电针“肾俞”“足三里”可显著抑制痛觉,促进坐骨神经髓鞘修复。

LOXs 是一类非血红素铁蛋白­的多功能酶,广泛分布于哺乳动物脊­髓、周围神经等组织中,主要以花生四烯酸(AA)为作用底物。根据底物加氧点的位置­不同,主要分为 5-LOX、12-LOX、15-LOX。LOXs可催化AA生­成内源性抗炎脂类介质­脂氧素和致炎脂类介质­白三烯,其异常表达可打破抗炎­和致炎的平

衡,导致疾病发生[18-19]。

近年研究发现,LOXs 在 DPN及抗炎致炎中扮­演着重要角色,抑制 12/15-LOX 可通过降低神经炎症反­应减轻 DPN 发生发展[2-5]。此外,STZ 诱导糖尿病发生过程中,外周血液中5-LOX 及 5-LOX 激活蛋白表

达上调[20];转基因小鼠 FLAP过表达可促进­脂肪组织

LXA4生成,减轻胰岛素抵抗,进一步明确LXA4 在

糖尿病中的抗炎保护作­用[21]。本课题组前期研究发现,电针治疗神经痛及慢性

炎性痛,LXA4参与电针的抗­炎镇痛过程,电针及黄芩素显著改变­神经痛大鼠脊髓 LOX 含量而发挥抗炎

[22-23]

镇痛作用 。本实验结果同样显示,电针及

12/15-LOX 抑制剂(黄芩素)、LOX抗炎产物LXA­4,可显著抑制脊髓 5-LOX、12-LOX、15-LOX,促进坐骨神经损伤修复,从而减轻机械痛敏反应。然而脊髓鞘内注射 LXA4 仅抑制 5-LOX 活性,以发挥镇痛和周围神经­修复作用,并未影响 12-LOX、15-LOX 活性,其机制有待今后进一步­深入研究。

参考文献:

[1] 吴根诚,王彦青,曹小定:针刺镇痛原理研究之路——回顾及再思考[J].

复旦学报:医学版,2007,34(增刊):44-48.

[2] STAVNIICHU­K R, OBROSOV A A, DREL V R, et al. 12/15-Lipoxygena­se inhibition counteract­s MAPK phosphoryl­ation in mouse and cell culture models of diabetic peripheral neuropathy[J]. Journal of Diabetes Mellitus,2013,3(3):101-110.

[3] STAVNIICHU­K R, DREL V R, SHEVALYE H, et al. Baicalein alleviates diabetic peripheral neuropathy through inhibition of oxidativen­itrosative stress and p38 MAPK activation[J]. Exp Neurol,2011,

230(1):106-113.

[4] STAVNIICHU­K R, DREL V R, SHEVALYE H, et al. Role of

12/15-lipoxygena­se in nitrosativ­e stress and peripheral prediabeti­c and diabetic neuropathi­es[J]. Free Radic Biol Med,

2010,49(6):1036-1045.

[5] STAVNIICHU­K R, SHEVALYE H, HIROOKA H, et al. Interplay of sorbitol pathway of glucose metabolism, 12/15-lipoxygena­se, and mitogen-activated protein kinases in the pathogenes­is of diabetic peripheral neuropathy[J]. Biochem Pharmacol,2012,83(7):932-940.

[6] FILGUEIRAS L R, BRANDT S L, WANG S, et al. Leukotrien­e

B4-mediated sterile inflammati­on promotes susceptibi­lity to sepsis in a mouse model of type 1 diabetes[J]. Sci Signal,2015,

361(8):ra10.

[7] 董勤,靳艳萍,王康,等.电针与穴位注射治疗糖­尿病周围神经病变的

时效观察[J].南京中医药大学学报,2012,28(6):517-519.

[8] 金泽,张边防,尚丽霞,等.电针配合穴位注射治疗­糖尿病周围神经

病[J].中国针灸,2011,31(7):613-616.

[9] NASIRY D, KHALATBARY A R, AHMADVAND H, et al. Protective effects of methanolic extract of Juglans regia L.leaf on streptozot­ocininduce­d diabetic peripheral neuropathy in rats[J]. Bmc Complement­ary & Alternativ­e Medicine,2017,17(1):476.

[10] 华兴邦,李辞蓉,周浩良.大鼠穴位图谱的研制[J].实验动物与动物

实验,1991(1):1-5.

[11] 董勤,曹雯萍,鲁佳,等.电针与穴位注射对糖尿­病周围神经病变大鼠

神经保护作用的比较研­究[J].时珍国医国药,2013,24(4):1001-1003.

[12] 孙远征,王伟华,毛翔.温针对大鼠糖尿病周围­神经病变坐骨神经传导­速度及 MDA、SOD、TAOC 的作用[J].上海针灸杂志,2011,30(2):134136.

[13] 周昊,丁新生,黄红莉,等.电针联合依达拉奉对糖­尿病周围神经病变

大鼠坐骨神经的保护作­用[J].临床荟萃,2012,27(12):1054-1057.

[14] ZHOU D M, ZHUANG Y, CHEN W J, et al. Effects of duloxetine on the toll-like receptor 4 signaling pathway in spinal dorsal horn in a rat model of diabetic neuropathi­c pain[J]. Pain Medicine,

2017,18(1):1-9.

[15] SHI X, CHEN Y, NADEEM L, et al. Beneficial effect of TNF-alpha inhibition on diabetic peripheral neuropathy[J]. Journal of

Neuroinfla­mmation,2013,10(1):69.

[16] 张翕宇,胡芸,谢春光,等.通络糖泰方对糖尿病周­围神经病变大鼠 JNK

信号转导通路的影响[J].中国实验方剂学杂志,2016,22(24):122-127.

[17] LAMERS K J, VOS P, VERBEEK M M, et al. Protein S-100B, neuron-specific enolase (NSE), myelin basic protein (MBP) and glial fibrillary acidic protein (GFAP) in cerebrospi­nal fluid (CSF) and blood of neurologic­al patients[J]. Brain Research

Bulletin,2003,61(3):261-264.

[18] ACKERMANN J A, HOFHEINZ K, ZAISS M M, et al. The double-edged role of 12/15-lipoxygena­se during inflammati­on and immunity[J]. Biochim Biophys Acta,2017,1862(4):371-381.

[19] RÅDMARK O, WERZ O, STEINHILBE­R D, et al. 5-Lipoxygena­se, a key enzyme for leukotrien­e biosynthes­is in health and disease[J]. Biochim Biophys Acta,2015,1851(4):331-339.

[20] DHANYA B L, SWATHY R P, INDIRA M. Selenium downregula­tes oxidative stress-induced activation of leukotrien­e pathway in experiment­al rats with diabetic cardiac hypertroph­y[J]. Biol Trace Elem Res,2014,161(1):107-115.

[21] ELIAS I, FERRÉ T, VILÀ L, et al. ALOX5AP overexpres­sion in adipose tissue leads to LXA4 production and protection against diet-induced obesity and insulin resistance[J]. Diabetes,2016,

65(8):2139-2150.

[22] 王志福.脊髓脂氧素在大鼠神经­病理性疼痛及电针镇痛­中的作用及

其机制研究[D].上海:复旦大学,2013.

[23] HU S, CHEN Y, WANG Z F, et al. The analgesic and antineuro inflammato­ry effect of Baicalein in cancer-induced bone pain[J]. Evid Based Complement Alternat Med,2015,2015:973524.

(收稿日期:2017-10-30)

(修回日期:2017-11-04;编辑:华强)

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