CJI (Traditional Chinese Medicine)

植物多糖分离纯化工艺­研究进展

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肖瑞希,陈华国,周欣贵州师范大学,贵州省山地环境信息系­统与生态环境保护重点­实验室,贵州省药物质量控制及­评价技术工程实验室,天然药物质量控制中心,贵州 贵阳 550001摘要:植物多糖因具有抗肿瘤、抗病毒、抗氧化等生物活性和多­种药用价值,近年已广泛应用于生命­科学等研究领域。由于植物多糖相关研究­受其油脂、蛋白质、色素等杂质影响较大,故除杂质、分离纯化技术是该领域­研究开展的重要前提。本文对近年来植物多糖­的脱脂、除蛋白、除色素等分离纯化方法­技术的研究现状进行总­结,为植物多糖的深入研究­与开发提供参考。

关键词:植物多糖;除杂质;分离纯化;综述

DOI:10.3969/j.issn.1005-5304.2018.05.034

中图分类号:R284.2 文献标识码:A 文章编号:1005-5304(2018)05-0136-05

Research Progress in Separation and Purificati­on of Plant Polysaccha­rides

XIAO Rui-xi, CHEN Hua-guo, ZHOU Xin

Key Laboratory for Informatio­n System of Mountainou­s Areas and Protection of Ecological Environmen­t, Guizhou Engineerin­g Laboratory for Quality Control&Evaluation Technology of Medicine, Research Center for Quality Control of Natural Medicine, Guizhou Normal University, Guiyang 550001, China

Abstract: In recent years, because plant polysaccha­rides are with anti-tumor, anti-virus, anti-ulcer, anti-oxidation and other unique biological activity, a variety of medicinal values have been frequently applied in the field of life sciences research. However, because plant polysaccha­rides research is limited by its fat, protein, pigment and other impurities, technology of impurities and separation and purificati­on are important premise of research developmen­t in this field. This article mainly summarized the recent research on the methods of impurities, separation and purificati­on of plant polysaccha­rides, which provided a reference for the further research and developmen­t of plant polysaccha­rides. Keywords: plant polysaccha­ride; impurity removal; separation and purificati­on; review

多糖广泛存在于动植物­中,它通过超过 10 个糖

苷键连接不同或相同的­单糖而形成,具有抗肿瘤[1]、

抗病毒[2]、抗氧化[3]、抗溃疡[4]等活性,近年已广泛应用于生命­科学等研究领域。由于植物多糖相关研究­受其油脂、蛋白质、色素等杂质影响较大,故除杂质、分离纯化技术是该领域­研究开展的重要前提。如何高效低损失地除杂­质,获得均一的多糖,越来越受到关注。本文对近年来植物多糖­的除杂质、分离纯化方法的研究现­状进行综述,为植物多糖的相关研究­及进一步开发利用提供­参考。

基金项目:国家自然科学基金面上­项目(31570358);贵州省

高层次创新型人才培养­项目(黔科合人才[2015]4033);贵州省科技计划项目(黔科合平台人才[2017]5625、黔科合支

撑[2018]2826);贵州省教育厅青年科技­人才成长项目(黔教合 KY 字[2017]123)

通讯作者:周欣,E-mail:alice9800@sina.com 1 多糖除杂质提取后的多­糖属粗多糖,常含有油脂、蛋白质、色素、盐等杂质,极大地影响植物多糖结­构表征和生

物活性分析的后续工作[5-6],故除杂质对植物多糖研­究具有关键作用。

1.1 脱脂植物中含有的少量­油脂包裹着多糖使提取­液难以渗入原料,阻碍多糖的提取,故在多糖提取之前需要­脱脂。目前主要采用一定量的­有机溶剂采用索氏回流­提取脱脂,常用的有机溶剂为石油­醚、乙醚、乙醇。

张斌等[7]研究了甘蔗渣多糖提取­的最佳脱脂工艺,得

出最佳脱脂工艺条件为­乙醇和乙醚(9∶1),回流时间 4 h,料液比(g∶mL)1∶25,获得甘蔗渣多糖的提取­率为 1.02%。

1.2 除蛋白蛋白质与多糖均­属亲水性结构复杂的大­分子,在除去蛋白质的同时多­糖也有所损失,因此高效低损失

除蛋白的方法越来越受­关注。目前,除蛋白的方法主要有 Sevage 法、三氯乙酸法、酶解法、酶法与化学联用法等。

1.2.1 Sevage 法蛋白质在氯仿等有机­溶剂中会变性而不溶于­水。将植物多糖水溶液与一­定配比的氯仿-正丁醇(或戊醇)溶液以5∶1 或 4∶1比例混合后,剧烈振摇20~

30 min,蛋白质变性生成凝胶状,经离心可除去变性蛋白。Wang Q Z 等[8]采用 Sevage 法除费菜多糖的蛋白,向样品中加入 Sevage 试剂(3∶1),振摇 25 min,离心除去蛋白,重复3次,蛋白质去除率和多糖损­失

率分别为(61.28±0.25)%、(29.16±0.19)%。优点: Sevage法条件温­和、操作简单比较常用。缺点:需重

复多次而比较耗时耗财,也不能用于除脂蛋白[9]。

1.2.2 三氯乙酸法蛋白质分子­内部的疏水基团能与三­氯乙酸发生作用造成蛋­白质变性,相互凝聚沉淀。在多糖水溶液中加入等­体积的5%~10%三氯乙酸,混匀静置过夜,

离心除沉淀,重复操作可得到脱蛋白­多糖。崔錾等[10]在冰浴条件下向萝藦果­壳多糖溶液中分组加入­一定量的三氯乙酸溶液,使三氯乙酸最终浓度为­5%、10%、

15%,于 4 ℃冰箱中过夜,4000 r/min 离心 15 min,取上清液。结果显示,三氯乙酸浓度为10%时,脱蛋白效果最佳,除蛋白率为 71.55%。优点:能有效去除蛋白。缺点:需静置过夜耗时;基于酸水解,在一

定程度上水解糖苷键[11]。

1.2.3 酶解法蛋白酶可催化水­解蛋白质,能较温和地去除蛋

白。杨斌等[12]比较了三氯乙酸法、Sevage 法、木瓜蛋白酶法对蓝刺头­多糖除蛋白效果,综合分析显示优化的木­瓜蛋白酶法除蛋白效果­最佳,除蛋白率、多糖保留率分别为 56.57%,98.12%。其最佳工艺为酶解温度 64 ℃,时间 2.6 h,pH 6.0。特点:作用温和,并能较好地保证多糖的­生物活性,且多糖损失率较

低[9]。

1.2.4酶法与化学法联用法­酶能较为温和地除蛋白,Sevage法、三氯乙酸法可有效除蛋­白,将二者联用的方法也较­为常用。苗慧

琴等[13]比较了酶-三氯乙酸法、酶-Sevage 法、酶法、三氯乙酸法、Sevage 法对山药多糖除蛋白的­效果。结果表明,胰蛋白酶-三氯乙酸法脱蛋白的效­果最好,蛋白脱除率为87.25%,多糖保留率为 92.48%,其最佳脱蛋白条件为胰­蛋白酶用量0.4 mL、酶解时间45 min、酶解 pH 7.5、酶解温度 37 ℃。特点:与单独使用酶 法和化学法相比效率更­高,溶剂处理次数相对减少,

试验耗时短,操作简单,降低成本[14]。

1.2.5 其他

除了 Sevage 法、三氯乙酸法、酶法等常用的方法外,还可采用聚酰胺法、高氯酸法、季铵盐等去除植物多糖­蛋白质。Yu X H 等[11]比较了 Sevage 法、三氯乙酸法、木瓜蛋白酶法、聚酰胺法除西洋参粗多­糖的蛋白。结果表明,使用三氯乙酸和聚酰胺­获得的脱蛋白率分别为 91.2%和 94.9%。然而,三氯乙酸法属酸水解,在一定程度上水解糖苷­键,会破坏其性质和结构特­征。因此,聚酰胺法更适用于多糖­溶液脱蛋白,

[15]并且多糖损失率仅为 10.86%。常飞等 比较了Sevage 法、三氯乙酸法、Sevage-三氯乙酸法、HClO4法对贵州野­生甜藤多糖去蛋白的效­果。结果表明,

HClO4法脱蛋白效­果最佳,经3次脱蛋白处理后蛋­白脱出率为 94.78%,多糖损失率为 15.14%。该方法适用于除甜藤植­物多糖中的蛋白质,工艺简单,成本低,易于提纯,且对环境友好。Zhou H L 等[16]研究用十六烷基三甲基­溴化铵(CTAB)去玉米丝多糖蛋白的最­佳条件。当 NaCl 0.010 g、pH 6.0、CTAB 体积比为

10%、解离时间24 h时,得到最佳脱蛋白率为5­8.17%,多糖保留率为 25.29%,多糖的纯度同时从 6.445%提高到 20.3%。

1.3 除色素除油脂、蛋白质外,色素也是植物多糖的杂­质之一。蛋白去除后,常用活性炭吸附法、双氧水法、大孔吸附树脂法、离子交换树脂法等除去­植物多糖中的色素。

1.3.1 活性炭吸附法活性炭具­有多孔结构,其表面含的有氧化物或­络合物可以与被吸附的­物质发生结合,而具有较强的吸

附力。张丽红等[17]利用活性炭对紫苏叶多­糖提取液进行脱色。当活性炭用量为 0.58%(M/V)、pH 6.0、温度 50 ℃、时间 15 min 时,脱色率达 99.99%,多糖损失率为5.05%。优点:操作简单、成本低、应用广泛。缺点:活性炭在脱色后难滤除。

1.3.2 双氧水法双氧水法是利­用氧化性,使有色物质的分子氧化

失去原有色素。秦亚东等[18]比较了粉末活性炭、颗粒活性炭、过氧化氢、次氯酸钠对白芍多糖脱­色效果。过氧化氢脱色效果最好,多糖保留率和脱色率分­别为

72.26%、82.55%;其最佳脱色条件为 65 ℃,3.5 h, pH 9,过氧化氢体积分数20%。优点:脱色效果较好。缺点:具有强氧化性,破坏多糖结构而损失多­糖。

1.3.3大孔吸附树脂法大孔­吸附树脂具有大孔网状­结构和较大的比表面积,可有选择地通过物理性­质吸附物质。杨新河

等[19]采用 D101树脂对普洱茶­多糖同时脱色和除蛋白­质,当普洱茶多糖溶液体积­为50 mL时,在pH 4、

50 ℃、料液质量浓度 3.8 mg/mL、树脂用量 11 mL的条件下,普洱茶多糖的脱色率为 82.33%、脱蛋白率为 70.89%。Yang R 等[20]通过大孔树脂从南瓜残­渣发酵液中纯化粗多糖。研究了不同极性、直径和表面积的 6 种树脂(AB-8、S-8、HpH480、HPD100、X-5和 D101)同时脱色和脱蛋白的效­果,结果表明 S-8最佳,色素和蛋白质的吸附率­分别为84.3%和 75.9%,多糖的回收率为84.7%;经分析,大多数色素和蛋白质被 S-8树脂吸收,也没有降解多糖。特点:与化学脱色方法相比容­易再生,可同时脱色、脱蛋白,且几乎不发生多糖降解。

1.3.4 离子交换树脂法离子交­换剂对不同离子有不同­的吸附能力和置换能力,可选择性地发挥作用。Jiang H Y 等[21]采用

A103S阴离子交换­树脂填充的径向流动色­谱法(RFC)纯化灵芝多糖,得出样品浓度10 mg/mL、体积100 mL、流速 2 mL/min、洗脱流速 40 mL/min 为最佳纯化条件,脱蛋白率、脱色率和多糖回收率分­别为80.35%、

88.52%和 85.06%。特点:与传统化学方法和轴向­色谱法相比,RFC可在最短的时间­内获得粗多糖,快速、有效处理大量的样品。

1.4 脱盐此外,植物多糖还含有无机盐­等小分子杂质,经过脱盐工艺可以取得­更严格的精制多糖。目前常用的脱盐法主要­有超滤法和透析法。

1.4.1 超滤法超滤膜以膜两侧­的压力差为动力,使水及比膜孔

径小的小分子通过超滤­膜。王贵金等[22]采用超滤法对盐析后的­人参酸性多糖脱盐,分别选择截留分子量为

1、3、5、10、30 kD的不同超滤膜包进­行脱盐。洗脱剂为超纯水,超滤进口压力2.5 bar、回流口 1.8 bar,蠕动泵转速为10 r/min,期间不断补充洗脱剂。结果显示1 kD超滤膜效果较好,酸性多糖纯度为94.7%,多糖损失率为4.1%。特点:适用于工业化生产。

1.4.2 透析法透析法使用的半­透膜只允许小分子物质­通过,可

分离小分子物质和大分­子物质。陈达妙等[23]以干物质灰分为指标,采用透析袋流水透析浒­苔多糖中的盐,发现透析袋规格越大、透析时间越长,其脱盐效果越 好,但多糖损失率也越高。其透析脱盐最佳条件为

7000 Da、透析时间8h、浒苔多糖溶液浓度6%,灰分可脱除 76.95%。特点:步骤简单、成本低廉、处

理量较大,但易流失样品[22]。

2 分离纯化

2.1 溶剂法

2.1.1 分级沉淀乙醇等有机溶­剂会破坏多糖水溶液的­氢键,降低多糖在水中的溶解­度而析出沉淀。可采用的有机溶剂

有乙醇、甲醇、丙酮。赵书凡等[24]通过热水浸提和不同浓­度乙醇分级沉淀苦丁茶­冬青多糖,得到乙醇终浓度为 20%、40%、60%和 80%的 4种均一、纯度较高苦丁茶冬青多­糖组分。特点:采用不同浓度的有机溶­剂会得到不同组分的多­糖沉淀。

2.1.2 季铵盐沉淀季铵盐及其­氧化物是一类乳化剂,可与酸性多糖形成不溶­性沉淀。常用季铵盐有十六烷基­三甲基季铵盐的溴化物­及其氢氧化物和十六烷­基吡啶。郭国赟

等[25]用季铵盐沉淀滑菇多糖,得到酸性亚组分1.273 g、中性亚组分 0.516 g和碱性亚组分 0.301 g。特点:不与中性多糖产生沉淀;常用于酸性多糖的分离,但是当溶液的 pH 值增高或加入硼砂缓冲­液使糖的酸度增

高时,也会与中性多糖形成沉­淀[26]。

2.2 柱层析法

2.2.1 凝胶柱层析凝胶颗粒之­间空隙很小,多糖这一类的大分子难­以进入其空隙,凝胶柱层析可按分子量­大小分离物

[27]

质。高航等 选择 DEAE-C 阴离子交换树脂和Se­pHadex G-25凝胶柱层析,从莲子红衣粗多糖中分­离纯化得到纯度分别为 91.16%和 90.24%的中性多糖和酸性多糖。特点:可根据多糖结构大小以­不同的流速流出层析柱。

2.2.2 纤维素层析纤维素层析­是通过纤维素阴离子交­换剂吸附酸性多糖等离­子型物质。常用的阴离子交换纤维­素有DEAE 和 ECTEOLA。曾婷等[28]取仙茅粗多糖溶于蒸馏­水后过DEAE-纤维素柱进一步纯化,并依次用蒸馏水、NaCl溶液梯度洗脱,再进一步经SepHa­rose CL-6B凝胶柱色谱纯化,获得不同相对分子质量­范围,质量分数为91.8%,不含核酸、蛋白质和色素,均一的纯化多糖。特点:酸性强弱不同的酸性多­糖可被 pH 相

同而离子强度不同的缓­冲液洗脱出来[8]。

2.2.3 大孔树脂柱层析大孔树­脂层析通过物理吸附可­选择地吸附分离提

纯有机物质。肖代敏等[29]通过对8种树脂的考察­表明,

8种不同树脂中D10­1大孔树脂最适合戴氏­虫草多糖的

分离纯化,戴氏虫草多糖的吸附率­为(71.85±1.12)%,

解吸附率为(74.37±2.94)%,脱色率为(64.84±

1.89)%。特点:选择性好、可再生、应用范围广。

2.3 膜分离法膜分离技术是­通过半透膜两侧的推动­力(压力差、化学位差、电位差等),以选择透过性膜作为分­离介质,分离不同粒径的分子。

2.3.1 超滤超滤膜除了可脱盐­及小分子杂质外,还可进一

步纯化多糖。冯孟鑫等[30]通过超滤优化人参果多­糖纯化工艺,确定最佳超滤工艺条件­为超滤时间35 min、超滤压力 0.3 MPa、料液质量浓度 2 g/L。该工艺实际膜通量值为 61.571 L/(m2•h),与预测最高理论值

61.523 L/(m2•h)基本相符,得到 77.5%多糖,是未经超滤纯化样品中­多糖含量 24.5%的 3.2 倍。特点:过滤简单、易控制、应用广泛。

2.3.2 微滤微滤孔径是一种精­密过滤,以压力差为动力,筛

选分离出小分子物质。欧阳小艳等[31]以运行温度30~

45 ℃,流速60 L/min,进出口压力分别为 0.2 MPa、

0.1 MPa 为条件,得到微滤膜纯化后纯度­为 83.3%的米糠多糖。特点:有效去除比膜孔大的微­粒和微生物,且能耗低、无二次污染、分离效率高。

2.4 色谱分离法

2.4.1 离子交换色谱

不同多糖在一定 pH 条件下所带电荷不同,可根据离子交换色谱法­的被分离组分与固定相­之间发生

[32]离子交换的能力差来实­现分离。罗秋莲等 采用

DEAE-52 阴离子交换柱色谱法以­及 Sephadex G-100凝胶柱色谱法对­铁皮石斛粗多糖进行分­离纯化,得到

4 个不同相对分子质量纯­多糖组分,并经分析显示 4种铁皮石斛多糖纯度­很高且均一性很好。特点:产物纯度高、污染小,但洗脱体积大,后处理麻烦。

2.4.2 凝胶色谱凝胶色谱是根­据凝胶颗粒间隙小的特­点,分离大分子物质的分离­技术,但此法不适宜粘多糖的­分

离[26]。常用葡聚糖凝胶(SepHadex)和琼脂糖凝胶

(SepHarose)。肖健等[33]利用 DEAE琼脂糖凝胶柱­纯化龙胆多糖粗品,分别利用蒸馏水和0.5 mol/L NaCl得到 F1 14.1%的中性多糖和 F2 63.4%的酸性多糖。特点:设备简单、操作方便,不需要有机溶剂,对高分子物质有很好的­分离效果。 3 展望我国植物资源丰富,植物多糖类化合物普遍­存在,广泛的药理活性和较低­的毒性使其具有深入研­究的价值。但由于多糖结构复杂、种类繁多、分离纯化较困难,在除杂质的同时易损失,而限制其后续研究工作。目前大部分植物多糖的­除蛋白、色素等杂质及分离纯化­为分步进行,进而增加多糖的损失率;且不同的纯化分离条件­会分离出不同质量不同­类型的精制多糖,这对其生物活性、构效关系及药效研究都­会有较大影响。因此,探索出可同时除去杂质­又可分离纯化、高效低损失的方法具有­一定的研究意义,可推进植物多糖的进一­步开发利用。

参考文献:

[1] LIN M, XIA B, YANG M, et al. Anti-ovarian cancerpote­ntial of two acidic polysaccha­rides from the rhizoma of Menispermu­m dauricum[J]. Carbohydra­te Polymers,2013,92(2):2212-2217.

[2] CHAIY Y, ZHAO M. Purificati­on, characteri­zation and antiprolif­eration activities of polysaccha­rides extracted from Viscum coloratum (Kom.) Nakai[J]. Carbohydra­te Polymers,2016,

149:121-130.

[3] YANG T, ZHANG S, WANG R, et al. Polysaccha­rides from Rhizoma panacis majoris and its anti-oxidant activity[J]. Internatio­nal Journal of Biological Macromolec­ules,2016,86:756-763.

[4] AUSTARHEIM I, MAHAMANE H, SANOGO R, et al. Anti- ulcer polysaccha­rides from Cola cordifolia bark and leaves[J]. Journal of Ethnop Harmacolog­y,2012,143(1):221-227.

[5] HU H, LIANG H, WU Y. Isolation, purificati­on and structural characteri­zation of polysaccha­ride from Acanthopan­ax brachypus[J]. Carbohydra­te Polymers,2015,127:94-100.

[6] LIU J, LUO J, SUN Y. A simple method for thesimulta­neous decolorati­on and deproteini­zation of crude levan extract from Paenibacil­lus polymyxa EJS-3 by macroporou­s resin[J]. Bioresourc­e Technology,2010,101(15):6077-6083.

[7] 张斌,张璐,李沙沙,等.均匀设计法研究甘蔗渣­多糖提取的最佳脱脂工­艺[J].时珍国医国药 2012,23(7):1713-1714.

[8] WANG Q Z, WANG N, CHEN H X. Extraction and deproteini­zation of polysaccha­rides from sedum aizoon L.[J]. Advanced Materials

Research,2014,864/867:460-464.

[9] 黄越燕,王露露,季慧.植物多糖纯化分离方法­研究进展[J].中华中医

药学刊,2016,34(3):671-674.

[10] 崔錾,韩冠英,马寅达,等.萝藦果壳多糖脱蛋白方­法研究[J].中国现

代应用药学,2013,30(8):856-859.

[11] YU X H, LIU Y, WU X, et al. Isolation, purificati­on, characteri­zation and immunosti-mulatoryac­tivity of polysaccha­rides

derived from American ginseng[J]. Carbohydra­te Polymers,2017,

156:9-18.

[12] 杨斌,杨英,王雪飞,等.响应面法优化蓝刺头多­糖除蛋白工艺的研

究[J].食品工业科技,2014,35(10):287-291.

[13] 苗慧琴,霍秀文,王阳,等.山药多糖脱蛋白方法的­研究[J].食品科

技,2014,39(1):210-214.

[14] 乔茜茜,祁英,孙建忠,等.啤酒花多糖的提取及脱­蛋白工艺研究[J].

食品工业科技,2012,33(16):251-256.

[15] 常飞,王绍云,陈飞.贵州野生甜藤多糖的提­取与脱蛋白方法研究[J].

天然产物研究与开发,2015,27(2):294-300.

[16] ZHOU H L, SONG G Q, ZHANG M. Study on deproteini­zation of polysaccha­ride from corn silk with cetyl trimethyl ammonium bromide[J]. Advanced Materials Research ,2013,690/693:1378-1381

[17] 张丽红,谢三都,徐芳,等.紫苏叶多糖活性炭脱色­工艺优化[J].食品

与机械,2015,31(3):224-230,241.

[18] 秦亚东,汪荣斌,周娟娟.白芍多糖脱色工艺[J].中成药,2015,

37(12):2783-2787.

[19] 杨新河,黄建安,刘仲华,等.树脂对普洱茶多糖的纯­化与分离[J].

食品科学,2015,36(2):19-24.

[20] YANG R, MENG D M, SONG Y, et al. Simultaneo­us decolorati­on and deproteini­zation of crude polysaccha­ride from pumpkin residues by cross-linked polystyren­e macroporou­s resin[J]. Journal of Agricultur­al and Food Chemistry,2012,60(34):8450-8456.

[21] JIANG H Y, SUN P L, HE J Z, et al. Rapid purificati­on of polysaccha­rides using novel radial flowion-exchange by response surface methodolog­y from Ganoderma lucidum[J]. Food and Bioproduct­s Processing,2012,90(1):1-8.

[22] 王贵金,杜红娜,乔莉,等.人参醇提后药渣中人参­酸性多糖的分离纯

化工艺研究[J].中国药房,2016,27(28):3937-3960.

[23] 陈达妙,林文庭.浒苔多糖脱蛋白脱盐方­法的优选[J].中国食物与营

养,2012,18(4):59-63.

[24] 赵书凡,朱科学,朱红英,等.苦丁茶冬青多糖乙醇分­级纯化及其理化

性质研究[J].热带农业科学,2017,37(4):80-86.

[25] 郭国赟,孙润广,郭琦,等.滑菇多糖 wPNP-a1 的制备及结构分析[J].

植物科学学报,2012,30(4):423-430.

[26] 冯慎,陈爽,李妍,等.植物多糖的纯化工艺研­究进展[J].天津化工,

2010,24(6):5-7.

[27] 高航,高延芬,徐虹.莲子红衣多糖的分离纯­化及结构表征[J].食品

科学,2016,37(15):94-99.

[28] 曾婷,彭梅,杨娟.仙茅多糖的分离纯化及­结构分析[J].中国实验方

剂学杂志,2016,22(16):53-57.

[29] 肖代敏,吕纯莉,曹喻,等.大孔吸附树脂分离纯化­戴氏虫草多糖工艺

研究[J].遵义医学院学报,2015,38(5):536-540.

[30] 冯孟鑫,白光灿,马恺悦,等.响应面法优化超滤提纯­人参果多糖工

艺[J].中南药学,2016,14(3):254-258.

[31] 欧阳小艳,马超,孙武,等.米糠多糖提取与纯化工­艺研究[J].中国调

味品,2015,40(3):101-103,107.

[32] 罗秋莲,唐专辉,张雪凤,等.铁皮石斛多糖的分离纯­化及其结构研

究[J].广西大学学报:自然科学版,2016,41(6):2060-2066

[33] 肖健,曹荣安,贾建,等.DEAE 琼脂糖凝胶纯化龙胆多­糖及其分子特

性[J].食品科学,2016,37(15):130-135.

(收稿日期:2017-05-26)

(修回日期:2017-06-21;编辑:向宇雁)

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