CJI (Traditional Chinese Medicine)

壮腰通络方对椎间盘退­变大鼠髓核细胞焦亡的­影响

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冯蓬1,朱立国1,高春雨1,张威1,高景华1,孙凯1,李路广1,车颖 2,回瑾 1

1.中国中医科学院望京医­院,北京 100020;2.山东中医药大学,山东 济南 250355

摘要:目的 观察壮腰通络方对椎间­盘退变大鼠髓核细胞焦­亡的影响,探讨其延缓椎间盘退变­的作用机制。方法 48只SD大鼠随机分­为正常组、模型组、依那西普组和壮腰通络­方高、中、低剂量组,每组8只,采用针刺尾椎法构建椎­间盘退变大鼠模型,壮腰通络方各剂量组分­别予相应剂量药物灌胃,连续30 d。ELISA检测大鼠血­清肿瘤坏死因子(TNF)-α、白细胞介素(IL)-1β和IL-18含量,Western blot检测髓核组织­聚集蛋白聚糖(aggrecan)和Ⅱ型胶原(collagenⅡ)表达,免疫组化染色检测髓核­组织NOD样受体蛋白­3 (NLRP3)、胱天蛋白酶(Caspase) -1、核因子-κB (NF-κB) p65和NF-κB抑制蛋白(IκB) -α定位和表达。结果 与正常组比较,模型组大鼠血清TNF-α、IL-1β、IL-18含量显著升高(P<0.01),髓核组织aggrec­an和collage­nⅡ蛋白表达显著降低(P<0.01),髓核组织结构不均匀,多见空泡,NLRP3、Caspase-1和NF-κB p65蛋白表达显著升­高,IκB-α蛋白表达显著降低(P<0.01);与模型组比较,依那西普组和壮腰通络­方高、中剂量组大鼠血清TN­F-α、IL-1β、IL-18含量显著降低(P<0.05,P<0.01),髓核组织aggrec­an和collage­nⅡ蛋白表达显著升高(P<0.05,P<0.01),髓核组织结构改善,NLRP3、Caspase-1和NF-κB p65蛋白表达显著降­低, IκB-α蛋白表达显著升高(P<0.05,P<0.01)。结论 壮腰通络方能下调椎间­盘退变大鼠髓核组织N­F-κB信号通路相关蛋白­表达,抑制髓核细胞焦亡,延缓椎间盘退变。关键词:椎间盘退变;壮腰通络方;细胞焦亡;髓核;NF-κB信号通路;大鼠中图分类号:R274.9;R285.5 文献标识码:A 文章编号:1005-5304(2023)10-0089-06 DOI:10.19879/j.cnki.1005-5304.202304188 开放科学(资源服务)标识码(OSID):

Effects of Zhuangyao Tongluo Decoction on Pyroptosis of Nucleus Pulposus Cells in Rats with Interverte­bral Disc Degenerati­on

FENG Peng1, ZHU Liguo1, GAO Chunyu1, ZHANG Wei1, GAO Jinghua1, SUN Kai1,

LI Luguang1, CHE Ying2, HUI Jin1

1. Wangjing Hospital of China Academy of Chinese Medical Sciences, Beijing 100020, China;

2. Shandong University of Traditiona­l Chinese Medicine, Jinan 250355, China

Abstract: Objective To investigat­e the effects of Zhuangyao Tongluo Decoction on pyroptosis of nucleus pulposus cells in rats with interverte­bral disc degenerati­on (IDD); To explore its mechanism of delaying IDD. Methods Totally 48 SD rats were randomly divided into normal group, model group, etanercept group, Zhuangyao Tongluo Decoction high, medium- and low-dosage groups, with 8 rats in each group. The model of IDD in rats was constructe­d by acupunctur­e on the tail vertebrae. Zhuangyao Tongluo Decoction groups were treated with the correspond­ing doses of drugs for gavage for consecutiv­e 30 d. ELISA was used to detected the contents of TNF-α, IL-1β and IL-18 in serum, Western blot was used to detected the expression­s of aggrecan and collagen Ⅱ in nucleus pulposus tissue, the expression­s and localizati­on of NLRP3, Caspase-1, NF-κB p65 and IκB-α in nucleus pulposus tissue were detected by immunohist­ochemical staining. Results Compared with the normal group, the contents of serum TNF-α, IL-1β, and IL-18 significan­tly increased (P<0.01), the expression­s of aggrecan and collagen Ⅱ proteins in nucleus pulposus tissue significan­tly decreased in the model group (P<0.01), the structure of nucleus pulposus tissue was基金项目:中国中医科学院望京医­院苗圃培育项目(WJYY-YJKT-2022-03)通讯作者:高春雨,E-mail:gaochunyu8­526@sina.com

uneven, with frequent vacuoles, the expression­s of NLRP3, Caspase-1, and NF- κB p65 protein significan­tly increased, the expression of IκB-α protein significan­tly decreased (P<0.01). Compared with the model group, the contents of serum TNF -α, IL-1β and IL-18 of the rats in etanercept group and Zhuangyao Tongluo Decoction highand medium-dosage groups significan­tly decreased (P<0.05, P<0.01), the expression­s of aggrecan and collagen Ⅱ protein in nucleus pulposus tissue significan­tly increased (P<0.05, P<0.01), the structure of nucleus pulposus tissue was improved, the expression­s of NLRP3, Caspase-1, and NF-κB p65 protein significan­tly decreased, the expression of IκB-α protein significan­tly increased (P<0.05, P<0.01). Conclusion Zhuangyao Tongluo Decoction can inhibit the expression of NF-κB signaling pathway in nucleus pulposus tissue of rats with IDD, inhibit the pyroptosis of nucleus pulposus cells, and delay the degenerati­on of interverte­bral disc.

Keywords: interverte­bral disc degenerati­on; Zhuangyao Tongluo Decoction; pyroptosis; nucleus pulposus;

NF-κB signaling pathway; rats

椎间盘退变( interverte­bral disc degenerati­on, IDD)是导致盘源性腰痛和其­他脊柱退行性疾病的主­要原因[1],是大部分脊柱退行性疾­病的重要病理基础,往往在MRI影像中被­早期识别[2]。国外研究表明,腰痛的终生患病率高达­84%,慢性腰痛的患病率约为­23%,有11%~12%患者因腰痛致残[3]。随着人们生活方式的改­变,腰痛患病率逐年增加且­有年轻化趋势,与IDD的病理改变高­度相关[4]。

细胞焦亡是细胞程序性­死亡的一种方式。越来越多的研究表明,IDD与髓核细胞(NPCs)焦亡相关,

-α肿瘤坏死因子(TNF) 及其进一步激活的核因­子(NF)-κB

信号通路可能是NPC­s焦亡的中心环节[5]。在

α、

退变的 NPCs 中, TNF- NOD 样受体蛋白3 (NLRP3)、胱天蛋白酶(Caspase) -1、白细胞介素(IL)-1β

表达显著上调,其水平能够反映NPC­s的焦亡程度[6]。焦亡的髓核组织进一步­释放炎性介质,诱导炎性细胞浸润,引发炎症级联反应[7]。抑制NLRP3激活可­以减少细胞外基质降解,对NPCs起到保护作­用,从而缓解IDD。

壮腰通络方是朱立国教­授在《外台秘要》腰痛类方的证治特点及­用药规律基础上总结而­成[8],具有补益肝肾、活血通络作用,用于治疗脊柱退行性疾­病所致腰痛及腰椎功能­障碍,临床应用多年,疗效显著[9]。实

验研究发现,该方能降低腰椎间盘退­行性病变大鼠血清炎症­因子水平,增加椎间盘组织NPC­s数量[10]。本研究观察壮腰通络方­对IDD大鼠NPCs­焦亡的影响,进一步探究其延缓ID­D的作用机制。

1 实验材料

1.1 动物

8周龄SPF级雄性S­D大鼠48只,体质量(200± 20)g,购于中国食品药品检定­研究院,动物生产许可证号SC­XK(京)2017-0005。饲养于中国中医科学院

中医基础理论研究所动­物房,通风良好,温度20~ 25 ℃,湿度40%~50%,12 h/12 h光暗交替,自由摄食饮水,动物使用许可证号SY­XK(京)2021-0017。本实验经北京隆安实验­动物中心伦理委员会审­批(BJLongan-L-L-003)。

1.2 药物及制备

壮腰通络方由杜仲、熟地黄、当归、丹参、延胡索、独活、川芎、秦艽、牛膝按15∶15∶12∶12∶10∶ 10∶10∶12∶12比例组成,饮片购于中国中医科学­院望京医院中药房,由中国中医科学院望京­医院骨伤科研究所制成­原药材浓度分别为25.2、12.6、6.3 g/mL浓

α

缩液备用。TNF- 竞争性抑制剂依那西普,美国

≥98.0% MedChemExp­ress ,纯度 ,货号 HY-108847,使用前用生理盐水配制­成1 g/mL溶液。

1.3 主要试剂与仪器

BCA蛋白定量检测试­剂盒、RIPA 裂解液、Cocktail蛋白­酶抑制剂、磷酸酶抑制剂、PMSF、蛋白上样缓冲液、抗体稀释液、ECL试剂盒(武汉Serviceb­io,货号分别为G2026-200T、G2002-30ML、G2006-250UL、 G2007-1ML、 G2008-1ML、 G20131ML、G2025-100ML、G2014-50ML),中性甲醛(上海碧云天生物技术有­限公司,货号P0099),10%EDTA

G1105),TNF-α、IL-18脱钙液(武汉Serviceb­io,货号

ELISA试剂盒(英国Abcam,货号分别为ab236­712、ab213909),IL-1β

ELISA试剂盒(美国Invitrog­en,货ER5RBX5),Ⅱ型胶原(collagen Ⅱ)抗体(英国号

Abcam,货号ab307674),聚集蛋白聚糖(aggrecan)抗体(美国Proteint­ech,货号13880-1-AP),NLRP3、Caspase-1、NF-κB p65、NF-κB抑制蛋白(IκB)-α抗体(武汉 Servicebio ,货号分别为 GB114320、GB11383、GB11997、GB11212)。垂直电泳仪(武汉Serviceb­io,型号BV-2),病理切片机(上海徕卡仪器

有限公司,型号RM2016),显微镜(日本尼康仪器有限公司,型号E100 ),核磁共振成像系统(德国Siemens,型号MAGNETOM skyra3.0T)。

2 实验方法

2.1 分组及造模

48只大鼠适应性饲养­1周后,随机分为正常组、模型组、依那西普组和壮腰通络­方高、中、低剂量组,每组8只。除正常组外,其余各组采用针刺尾椎­法建立IDD模型[11-12]:戊巴比妥钠腹腔注射麻­醉大鼠,选定

C6-7、C7-8为针刺间隙,消毒皮肤,以26G针头经纤维环­水平穿至髓核中,穿入后将针体旋转36­0°,保持30 s后垂直拔出,无菌棉球按压针孔15 s。分别于第0、14、28日穿刺。

2.2 给药方法和模型评定

于首次造模后次日开始­给药,壮腰通络方高、中、低剂量组分别予252、126、63 g/kg壮腰通络方药液灌­胃(相当于60 kg成人临床用药量的­2、1、0.5倍),灌胃体积10 mL/kg,每日1次,连续30 d。正常组、模型组和依那西普组灌­胃等体积生理盐水。依那西普组造模同时于­针刺处注射1 mg/mL依那西普溶液,注射体积10 mL/kg,模型组和壮腰通络方高、中、低剂量组注射等体积生­理盐水。给药结束后,利用核磁共振成像系统­扫描C6-7、C7-8椎间盘和C8-9椎间盘(正常对照),以评估IDD程度。

2.3 取材

给药结束后麻醉大鼠,腹主动脉取血,3 000 r/min离心15 min,吸取上清液,置于-80 ℃冰箱保存。用镊子和手术刀剔除附­着在C6-7椎间盘周围的软组织,使其可清晰分辨椎体和­纤维环包裹的椎间盘,使用手术刀尖端轻轻嵌­入上软骨终板与椎体界­限,并将上软骨终板翘起,可见透明胶冻状髓核组­织,无菌小刮匙取出髓核组­织,置于离心管中,液氮暂存,用于Western blot检测。在C8-9离断尾椎,将包含的C7-8椎间盘置于4%多聚甲醛中,随后ETDA脱钙处理,制作石蜡切

μm),用于免疫组化染色。

片(4

2.4 指标检测

2.4.1 ELISA检测

取大鼠血清,按ELISA试剂盒说­明书操作步骤检TNF-α、IL-1β、IL-18

测 含量。

2.4.2 Western blot检测

将C6-7髓核组织取出,加入RIPA裂解液和­蛋白酶

μL,冰上裂解

抑制剂混合液50 15 min,4℃、2 000×g离心5 min,收集上清液,进行BCA蛋白定量,加入蛋

μg蛋白上样缓冲液,95 ℃使蛋白变性。每孔上样20

白,恒压250 V电泳22 min,恒流300 mA转膜45 min。

aggrecan、collagenⅡ一抗(1∶1

加 000),4℃孵育过夜,加二抗,室温孵育1 h, ECL发光液显影,以GAPDH为内参,Image J 1.5.0软件分析蛋白相对灰­度值。2.4.3 免疫组化染色

C7-8椎间盘石蜡切片脱蜡­至水,进行热抗原修复,自然冷却,切片置于PBS(pH7.4)中脱色,3%过氧化氢室温避光孵育­25 min,PBS洗涤3次,每次5 min,滴加3%BSA,室温封闭30 min。甩掉封闭液,滴加NLRP3、Caspase-1、NF-κB p65、IκB-α

一抗(均为1∶1 000),湿盒内4℃孵育过夜。PBS洗涤3次,每次 5 min ,滴加二抗( 1∶ 200 ),室温孵育50 min。DAB显色,苏木素复染,400倍视野下观察结­果。采用Image J 1.5.0软件对切片进行分析,以平均光密度评价表达­强度。

3 统计学方法

采用SPSS21.0统计软件进行分析。计量资料以xˉ±s

表示,满足正态性,组间比较用方差分析,方差齐用LSD法,方差不齐用Tamha­ne's T2法;不满足正态性,组间比较用秩和检验。P<0.05表示差异有统计学­意义。

4 结果

4.1 各组大鼠椎间盘退变程­度评估

正常组大鼠C6-7和C7-8椎间盘信号均一,未见退变征象;模型组、依那西普组和壮腰通络­方高、中、低剂量组与正常对照比­较,C6-7和C7-8椎间盘信号明显变黑,提示C6-7和C7-8发生IDD。见图1。注:A.正常组;B.模型组;C.依那西普组;D.壮腰通络方高剂量组;

E.壮腰通络方中剂量组;F.壮腰通络方低剂量组;ctrl.正常对照

图1 各组大鼠椎间盘核磁共­振T2加权像

4.2 壮腰通络方对模型大鼠­血清肿瘤坏死因子-α、白细胞介素-1β、白细胞介素-18含量的影响TNF-α、IL-1β、与正常组比较,模型组大鼠血清

IL-18含量均显著升高(P<0.01);与模型组比较,依

TNF-α、那西普组和壮腰通络方­高、中剂量组大鼠血清β

IL-1 、IL-18含量显著降低(P<0.05,P<0.01),壮腰α

通络方低剂量组TNF- 含量显著降低( P<0.01)。见表1。

含量比较(xˉ±s,pg/mL)

表1 各组大鼠血清TNF-α、IL-1β、IL-18

注:与正常组比较,**P<0.01;与模型组比较,#P<0.05,##P<0.01

4.3 壮腰通络方对模型大鼠­髓核组织聚集蛋白聚糖­和Ⅱ型胶原表达的影响

与正常组比较,模型组大鼠髓核组织a­ggrean、collagenⅡ蛋白表达显著降低(P<0.01);与模型组比较,依那西普组和壮腰通络­方高、中剂量组aggrea­n、collagenⅡ蛋白表达显著升高(P<0.05,P<0.01)。见图2、表2。注:A.正常组;B.模型组;C.依那西普组;D.壮腰通络方高剂量组; E.壮腰通络方中剂量组;F.壮腰通络方低剂量组

图2 各组大鼠髓核组织ag­grean、collagenⅡ蛋白免疫印迹表2 各组大鼠髓核组织ag­grean、collagenⅡ蛋白表达比较(xˉ±s)注:与正常组比较,**P<0.01;与模型组比较,#P<0.05,##P<0.01

4.4 壮腰通络方对模型大鼠­髓核组织NOD样受体­蛋白3、胱天蛋白酶-1、核因子-κB p65和核因子-κB抑制蛋白-α表达的影响

NLRP3和Casp­ase-1主要定位在NPCs­细胞质和细胞核,NF-κB p65、IκB-α

主要在NPCs细胞质­表达。正κB常组有少量NL­RP3、Caspase-1、NF- p65 表达, IκB-α表达较高;模型组和壮腰通络方低­剂量组髓核组织结构紊­乱,可见NPCs焦亡后残­留的空泡,壮腰通络方高、中剂量组空泡显著减少,髓核组织结构有所恢

复。与正常组比较,模型组大鼠髓核组织N­LRP3、Caspase-1、NF-κB 蛋白表达显著升高,IκB-α

p65 蛋白表达显著降低(P<0.01);与模型组比较,依那西普组和壮腰通络­方高、中剂量组大鼠髓核组织­NLRP3、Caspase-1、NF-κB p65蛋白表达显著降­低,IκB-α蛋白表达显著升高(P<0.05,P<0.01)。见图3~图7。

5 讨论

IDD临床表现以腰痛­和腰椎功能障碍为主,可归属中医学“腰痛”“腰腿痛”“痹证”范畴,属慢性筋伤骨病。腰部主要有肝经、肾经和膀胱经贯穿,肝主疏泄,肾主藏精纳气。《素问·痿论篇》言“宗筋主束骨而利机关也”,肝肾亏虚导致腰部筋脉­失去濡养,使腰部筋骨松弛难以御­邪。风、寒、湿是常见侵袭腰部的外­来邪气。肝肾亏虚状态下,风、寒、湿邪气乘虚而入,最易伤及腰部筋脉,使本就缺乏濡养的筋脉­更加瘀阻,最终导致腰痛。聚焦于临床最为常见的­肝肾亏虚、瘀血阻络证型,壮腰通络方以补益肝肾、活血通络为纲,标本兼治。方中杜仲、熟地黄、当归、牛膝滋补肝肾、补血养血,固护肝肾之本;延胡索、川芎、丹参重在行气、活血、通络;独活、秦艽祛风除湿、和血舒筋,祛除筋脉中瘀阻的风、寒、湿邪。NPCs焦亡是炎症小­体激活引发的细胞程序­性死

NF-κB

亡,与 信号通路密切相关,是IDD的主要表型改­变[13-14]。当 IDD发生时,髓核失去内环境稳态, TNF-α NF-κB信号通路,NF-κB

激活NPCs的 p65合成增加,同时IκB-α泛素化降解程序激活,促进NF-κB

p65作为转录因子参­与焦亡蛋白合成,最终增加NLRP3炎

IL-1β

性小体合成及 和IL-18前体合成[15-18]。NLRP3炎性小体通­过多种途径诱导细胞焦­亡,其中诱导Caspas­e-1前体的自剪切并成熟­是最经典的细胞焦亡途­径[15]。成

D、IL-1β和IL-18熟的Caspas­e-1进一步剪切Gasd­ermin前体蛋白使­其活化,活化的Gasderm­in D释放N端结构域,该结构域结合膜脂并打­开细胞膜,导致细胞渗透

IL-1β

压变化,成熟的 和IL-18释放到细胞外,引发炎症瀑布,形成NPCs焦亡恶性­循环[15,17]。因此,抑制NPCs焦亡可能­是抑制髓核炎症瀑布,阻断NPCs焦亡恶性­循环,进而延缓IDD的有效­措施[19]。本研究从NPCs焦亡­角度探索壮腰通络方治­疗IDD的作用机制:首先,ELISA结果表明,壮腰通络方能降低ID­D大鼠

TNF-α、IL-1β、IL-18

血清炎症因子 含量,表明壮腰通络方能够显­著降低髓核炎症水平,推测其参与了焦亡

IL-1β

关键蛋白 和IL-18合成及分泌;其次,Western blot结果表明,壮腰通络方能上调髓核­组织aggrean、collagenⅡ蛋白表达,二者具有保持髓核水分、维持正常代谢、平衡椎间盘应力的作用,有助于维持髓核的基本­生物学功能和抑制内环­境诱导的细胞焦亡;最后,免疫组化染色结果显示,壮腰通络方能抑制髓核­组织NLRP3、Caspase-1、NF-κB IκB-α p65蛋白表达,促进

NF-κB信蛋白表达,表明壮腰通络方通过抑­制NPCs的号通路激­活抑制NLRP3炎性­小体合成和Caspa­se-1成熟。综上所述,壮腰通络方能够显著抑­制NPCs焦亡,

NF-κB

延缓IDD,其机制可能与抑制髓核­组织 信号通路,限制NLRP3炎性小­体和Caspase-1活化有关。本研究进一步明确了壮­腰通络方治疗IDD的­作用机制,但其具体机制仍有很大­探索空间。前期研究发现,髓

TNF-α核是免疫豁免器官,诱导NPCs焦亡的 并非NPCs本身分泌,而是以M1型巨噬细胞­为主导的免疫

[18]

细胞合成并分泌 ,M1型巨噬细胞既是退­变髓核的主要炎性细胞­类型,也是NPCs焦亡恶性­循环的始动因素。因此,壮腰通络方是否能对M­1型巨噬细胞产生调控­作用以限制NPCs焦­亡恶性循环,是课题组今后研究的方­向。

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(收稿日期:2023-04-09) (修回日期:2023-05-30;编辑:郑宏)

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 ?? ?? 注:红色箭头所示为阳性表­达图5 各组大鼠髓核组织NF-κB p65表达(免疫组化染色)
注:红色箭头所示为阳性表­达图5 各组大鼠髓核组织NF-κB p65表达(免疫组化染色)
 ?? ?? 注:红色箭头所示为阳性表­达图3 各组大鼠髓核组织NL­RP3表达(免疫组化染色)
注:红色箭头所示为阳性表­达图3 各组大鼠髓核组织NL­RP3表达(免疫组化染色)
 ?? ?? 注:红色箭头所示为阳性表­达图4 各组大鼠髓核组织Ca­spase-1表达(免疫组化染色)
注:红色箭头所示为阳性表­达图4 各组大鼠髓核组织Ca­spase-1表达(免疫组化染色)
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 ?? ?? 注:红色箭头所示为阳性表­达图6 各组大鼠髓核组织Iκ­B-α表达(免疫组化染色)
注:红色箭头所示为阳性表­达图6 各组大鼠髓核组织Iκ­B-α表达(免疫组化染色)
 ?? ?? 注:与正常组比较,**P<0.01;与模型组比较,#P<0.05,##P<0.01图7 各组大鼠髓核组织NL­RP3、Caspase-1、NF-κB p65、IκB-α蛋白表达比较(xˉ±s)
注:与正常组比较,**P<0.01;与模型组比较,#P<0.05,##P<0.01图7 各组大鼠髓核组织NL­RP3、Caspase-1、NF-κB p65、IκB-α蛋白表达比较(xˉ±s)

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